Ovaires / Ovulation
Études animales
Implication ECS
Dans les ovocytes de souris, CB1, CB2 et GPR55 les ARNm provenant de la vésicule germinale à la métaphase II, CB2 et GPR55 la teneur en protéines a augmenté au cours de la même période. Dans les vésicules germinales, seulement CB1 a été localisé dans l'oolemme, mais il a complètement disparu à la métaphase I. TRPV1 était toujours indétectable. Lorsque les ovocytes ont mûri in vitro avec CB1 et CB2 mais pas GPR55 antagonistes, un retard significatif de la dégradation des vésicules germinales s'est produit, soutenu par une concentration élevée d'AMPc intra-ovocytaire. Bien que CB1/ 2 antagonistes n'ont pas affecté l'émission du corps polaire I ni l'alignement des chromosomes, GPR55 antagoniste altéré dans ~ 75% des ovocytes la formation de fuseaux de métaphase I et de métaphase II de taille normale (Cecconi et al., 2019). Ces résultats suggèrent un rôle important pour l'ECS dans la maturation des ovocytes.
Souris manquantes CB1 et CB2 avait une surface et un volume ovariens considérablement réduits, moins de follicules ovariens et une maturation anormale des ovocytes (Totorikaguena et al., 2020).
Chez les chats, CB1 n'a été détecté que dans les cellules de la granulosa folliculaire tertiaire alors que les follicules plus immatures étaient négatifs. Le FAAH a été trouvé dans les follicules pré-antraux ovariens, le cytoplasme ovocytaire et dans les cellules de la granulosa des follicules primaires, secondaires et tertiaires. Les cellules lutéales étaient immunopositives pour les deux CB1 et FAAH. Parce que CB1 dans l'oviducte a été trouvée uniquement dans les cellules ciliées, il pourrait représenter un marqueur spécifique au moins chez les chats. En revanche, l'immunoréactivité FAAH a été observée dans les cellules ciliées et non ciliées (Pirone et al., 2017).
Dans les explants de l'hypophyse antérieure de brebis anestreuses, il a été constaté que l'AEA inhibe la sécrétion de l'hormone de libération de gonadotrophine et stimule la sécrétion de l'hormone lutéinisante et de l'hormone folliculo-stimulante (Tomaszewska-Zaremba et al., 2020). Ces effets peuvent être médiés par CB1, qui est présent dans l'hypophyse antérieure.

Plante cannabinoïdes
Chez les rats pré-œstrogènes, l'application de THC (2 mg ip) entre 12.00h16.00 et 24h1977 a supprimé la montée de l'hormone lutéinisante, de l'hormone folliculo-stimulante, de la prolactine et de la prostaglandine E, provoquant un retard de XNUMX heures dans l'ovulation. Cet effet a été réduit avec l'application le matin ou en fin d'après-midi (Ayalon et al., XNUMX). Veuillez noter qu'il s'agit d'une dose très élevée pour les normes humaines.
Chez la souris vierge par voie orale THC (0, 1, 5 ou 25 mg / kg) ou extrait de cannabis (0, 3, 15 ou 75 mg / kg) pendant 70 jours retarde l'entrée en pré-œstrus (toutes les doses), déprime la progestérone sérique (75 mg / kg d'extrait) et inhibe la réceptivité féminine (25 mg / kg THC et 75 mg / kg d'extrait). La durée du cycle œstral ou l'accouplement n'étaient pas significativement différents, mais les grossesses à terme ont été réduites de 32 et 68% pour les doses moyennes et élevées respectivement. Les grossesses réussies ont été en grande partie rétablies après une période de sevrage de 30 jours (Kostellow et al., 1980). Veuillez noter que les doses utilisées sont très élevées pour les normes humaines.

Études humaines
Implication ECS
Dans les ovaires humains, l'ECS est largement exprimée dans la moelle et le cortex avec CB2 plus abondant que CB1 dans les cellules de la granulosa des follicules primordiaux, primaires, secondaires et tertiaires, du corps jaune et du corps albicans. NAPE-PLD et FAAH ont été observés dans les follicules secondaires et tertiaires en croissance et dans les corps jaunes et albicantes. L'AEA est plus abondante dans les follicules matures que dans les follicules immatures et était prédictive de la maturité des ovocytes suggérant un rôle dans l'ovulation (El-Talatini et al., 2009).
cannabinoïde-des enzymes dégradantes et cannabinoïde CB1 récepteur sont présents dans les ovocytes humains. Plus précisément, le FAAH est détecté à la périphérie de l'ovocyte du stade GV au stade MI et colocalisé avec CB1. Plus tard, au stade MII, le FAAH se propage dans l'ovocyte, tandis que l'immunomarquage MAGL est homogène à travers l'ovocyte à tous les stades de la maturation et ne chevauche que CB1 au stade GV (Agirregoitia et al., 2015, 2016).
Dans le cycle menstruel humain, les niveaux d'AEA dans la phase folliculaire tardive étaient légèrement plus élevés que ceux dans la phase folliculaire précoce. Par la suite, les niveaux d'AEA ont culminé au moment de l'ovulation dans les deux cohortes. Enfin, les niveaux les plus bas d'AEA ont été mesurés en phase lutéale. De plus, il y avait des corrélations positives très significatives entre la concentration plasmatique d'AEA et les niveaux sériques de FSH, LH et E2, alors que le niveau d'AEA n'était pas corrélé avec P pendant le cycle menstruel normal (Cui et al., 2017).

Plante cannabinoïdes
Dans les ovocytes humains, la maturation in vitro (dans le cadre du processus de fécondation in vitro) est accélérée par THC (à une concentration de nM à M), entraînant une augmentation du taux de formation / succès de blastocystes (Totorikaguena et al., 2019). Les résultats suggèrent THC pourrait être utile dans certaines formes / aspects de la fécondation in vitro.

littérature:
Agirregoitia, E., Ibarra-Lecue, I., Totorikaguena, L., Mendoza, R., Expósito, A., Matorras, R., Urigüen, L., et Agirregoitia, N. (2015). Dynamique d'expression et de localisation du cannabinoïde dans les cellules de la granulosa pendant la maturation nucléaire des ovocytes. Fertil. Steril. 104, 753–760.
Agirregoitia, E., Totorikaguena, L., Expósito, A., Mendoza, R., Matorras, R., et Agirregoitia, N. (2016). Dynamique d'expression et de localisation cannabinoïde-dégradant les enzymes FAAH et MGLL par rapport à CB1 pendant la maturation méiotique des ovocytes humains. Cell Tissue Res. 365, 393–401.
Ayalon, D., Nir, I., Cordova, T., Bauminger, S., Puder, M., Naor, Z., Kashi, R., Zor, U., Harell, A., et Lindner, HR ( 1977). Effet aigu du delta1-tétrahydrocannabinol sur l'axe hypothalamo-hypophyso-ovarien chez le rat. Neuroendocrinologie 23, 31–42.
Cecconi, S., Rossi, G., Oddi, S., Di Nisio, V., et Maccarrone, M. (2019). Rôle du major endocannabinoïde-Récepteurs de liaison pendant la maturation des ovocytes de souris. Int. J. Mol. Sci. 20.
Cui, N., Wang, L., Wang, W., Zhang, J., Xu, Y., Jiang, L., et Hao, G. (2017). La corrélation de Anandamide avec la gonadotrophine et les hormones stéroïdes sexuelles pendant le cycle menstruel. L'Iran. J. Basic Med. Sci. 20, 1268–1274.
El-Talatini, MR, Taylor, AH, Elson, JC, Brown, L., Davidson, AC et Konje, JC (2009). Localisation et fonction du endocannabinoïde dans l'ovaire humain. PloS One 4, e4579.
Kostellow, AB, D. Ziegler, J. Kunar, Fujimoto, GI et Morrill, GA (1980). Effet de cannabinoïdes sur le cycle œstral, l'ovulation et la capacité de reproduction des souris femelles A / J. Pharmacologie 21, 68–75.
Pirone, A., Lenzi, C., Briganti, A., Abbate, F., Levanti, M., Abramo, F., et Miragliotta, V. (2017). Répartition spatiale des cannabinoïde récepteur 1 et amide hydrolase d'acide gras dans l'ovaire et l'oviducte du chat. Acta Histochem. 119, 417–422.
Tomaszewska-Zaremba, D., Wojtulewicz, K., Paczesna, K., Tomczyk, M., Biernacka, K., Bochenek, J., et Herman, AP (2020). L'influence de Anandamide sur la sécrétion d'hormone hypophysaire antérieure dans l'étude Ewes-Ex Vivo. Anim. Accès libre J. MDPI 10.
Totorikaguena, L., Olabarrieta, E., López-Cardona, AP, Agirregoitia, N., et Agirregoitia, E. (2019). Le tétrahydrocannabinol module la maturation in vitro des ovocytes et améliore les taux de blastocystes après la fécondation in vitro. Cellule. Physiol. Biochem. Int. J. Exp. Cellule. Physiol. Biochem. Pharmacol. 53, 439–452.
Totorikaguena, L., Olabarrieta, E., Lolicato, F., Romero-Aguirregomezcorta, J., Smitz, J., Agirregoitia, N., et Agirregoitia, E. (2020). le endocannabinoïde Le système module la physiologie ovarienne et son activation peut améliorer la maturation in vitro des ovocytes. J. Cell. Physiol.